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    免疫組化中常用的組織和細(xì)胞標(biāo)本管理方法

    發(fā)布時(shí)間: 2015-06-25  點(diǎn)擊次數(shù): 2398次

        分析免疫組化,是應(yīng)用免疫學(xué)基本原理——抗原抗體反應(yīng),即抗原與抗體特異性結(jié)合的原理,通過化學(xué)反應(yīng)使標(biāo)記抗體的顯色劑(熒光素、酶、金屬離子、同位素)顯色來(lái)確定組織細(xì)胞內(nèi)抗原(多肽和蛋白質(zhì)),對(duì)其進(jìn)行定位、定性及定量的研究,稱為免疫組織化學(xué)技(immunohistochemistry)或免疫細(xì)胞化學(xué)技術(shù)(immunocytochemistry)。常用的免疫組化組織和細(xì)胞樣本該怎么管理?
     (一) 石蠟切片
    石蠟切片是制作組織標(biāo)本zui常用、zui基本的方法 。
    zui大優(yōu)點(diǎn)是組織形態(tài)保存好,且能作連續(xù)切片,有利于各種染色對(duì)照觀察; 
    石蠟塊還能長(zhǎng)期存檔,供回顧研究。 
    石蠟切片制作過程對(duì)組織內(nèi)抗原顯現(xiàn)有一定的影響,但可通過某些措施予以改
    善,因而它是大多數(shù)免疫組化中的組織標(biāo)本制作方法。 
    1.取材的特殊要求及注意事項(xiàng) 
    *標(biāo)本新鮮:一般在2h以內(nèi)進(jìn)行,超過2h,組織將有不同程度的自溶,其抗原
    或變性消失,或嚴(yán)重彌散。 
    *取材部位:除取病灶或含待檢抗原部位外,還應(yīng)取病灶與正常交界處,即所取組織切片中同時(shí)應(yīng)有抗原陽(yáng)性和陰性區(qū),以形成自身對(duì)照。 
    *-細(xì)胞壞死后,不僅抗原彌散或消失,而且常引起非特異著色,干擾觀察,因此取材時(shí)應(yīng)盡可能避開壞死區(qū)。 
    2.取材的特殊要求及注意事項(xiàng)(續(xù)) 
    *避免擠壓:取材時(shí)組織受擠壓可使邊緣部細(xì)胞形態(tài)改變并加深非特異著色,因
    而取材時(shí)應(yīng)使用鋒利的刀刃,鑷取組織動(dòng)作要輕;經(jīng)窺鏡直接鉗取的組織往往有
    過度擠壓,觀察結(jié)果時(shí)應(yīng)有所考慮。 
    3.固定及常用的固定液 
    *取材后的組織需立刻投于固定劑中 
    固定使組織和細(xì)胞的蛋白質(zhì)凝固,終止內(nèi)源性或外源性酶反應(yīng),防止組織自溶或異溶,以保持原有結(jié)構(gòu)和形態(tài);對(duì)免疫組化而言更有原位保存抗原的作用,避免抗原失活或彌散。 
    *常用固定液:固定劑品種很多,但大多屬于醛類和醇類。其固定原理不同,各有優(yōu)缺點(diǎn)。 
    -醛類(常用甲醛、戊二醛和多聚甲醛) 
    -醇類(常用乙醇) 
    -其它 (丙酮) 
    (1) 醛類 
    *甲醛(福爾馬林)應(yīng)用zui廣 
    -原理:形成分子間的交聯(lián),影響蛋白構(gòu)型而使之固定。 
    -優(yōu)點(diǎn):形態(tài)結(jié)構(gòu)保存好,且穿透性強(qiáng),組織收縮少。 
    -缺點(diǎn): 
    *甲醛放置過久可氧化為甲酸,使溶液pH降低,影響染色; 
    *醛基與抗原蛋白的氨基交聯(lián)形成羧甲基,使抗原決定簇的三維構(gòu)象出現(xiàn)空間障礙; 
    *分子間交聯(lián)形成的網(wǎng)格結(jié)構(gòu)可能部分或*掩蓋某些抗原決定簇,使之不能充分暴露??稍斐杉訇幮缘娜旧Y(jié)果。 
    -注意事項(xiàng): 
    C),為此組織塊不宜過厚。?*縮短固定時(shí)間,降低固定溫度(4 
    *改用中性緩沖福爾馬林,以pH值7.2~7.4 0.01mol/L的磷酸鹽緩沖液配制成10%甲醛固定液,減少固定液pH的變化。 
    *固定后充分水洗以減少分子間交聯(lián)。 
    *切片在作免疫組化染色前,先經(jīng)預(yù)處理使抗原再現(xiàn)(抗原修復(fù))。

    *戊二醛: 
    -穿透性強(qiáng),微細(xì)結(jié)構(gòu)保存好,但對(duì)抗原有一定影響,常與其他固定劑聯(lián)合用作免疫電鏡固定液。 
    *多聚甲醛(常用4%): 
    -可用于免疫電鏡;也可用于免疫熒光染色。 
    *主要檢測(cè)組織內(nèi)一些性能嬌弱的抗原特別是細(xì)胞表面抗原,例如各類淋巴細(xì)胸分化決定簇(CD)、主要組織相容性抗原等。 
    (2) 醇類 
    * zui常用的醇類固定劑是乙醇。 
    -其固定作用:使細(xì)胞內(nèi)蛋白、糖類發(fā)生沉淀。 
    -優(yōu)點(diǎn):穿透性強(qiáng)、抗原性保存好。 
    -缺點(diǎn): 
    *脫水性強(qiáng),易引起組織收縮、變硬,影響切片質(zhì)量,因而乙醇固定時(shí)間不宜過長(zhǎng)(2h內(nèi))。 
    *乙醇使蛋白變性的作用輕,固定后可再溶解;染色過程中,溫育時(shí)間長(zhǎng),抗原可流失而減弱反應(yīng)強(qiáng)度。 
    (3) 其它固定劑 
    *丙酮: 
    -對(duì)抗原性的保存好,但脫水性更強(qiáng),較少 用于組織標(biāo)本,但細(xì)胞爬片常用丙酮固定。
     
    (二) 冰凍切片
    *冰凍切片是指將組織在冷凍狀態(tài)下直接切片。 
    *在切片前組織不經(jīng)過任何化學(xué)藥品處理或加熱過程。 
    -縮短了制片時(shí)間 
    -抗原性不受損失 
    *對(duì)穩(wěn)定性差的抗原,如淋巴細(xì)胞表面抗原尤其適合。 
    *組織凍結(jié)過程中,細(xì)胞內(nèi)、外的水分會(huì)形成冰晶,凍結(jié)的速度愈慢,冰晶顆粒愈大,可嚴(yán)重影響組織、細(xì)胞的形態(tài)結(jié)構(gòu)。因此制備凍塊時(shí)要求低溫、速凍。 
    1、冰凍組織塊的常用方法 
    *液氮中冰凍:組織投入液氮中 (-196?C)10-20sec。
    *干冰中加入丙酮(或異戊烷),液體立即氣化起泡,溫度降至-70?C ,將組織投入,若在干冰丙酮中置一盛有異戊烷的容器,組織投入該容器內(nèi)結(jié)凍則更好。 
    -上述組織在速凍時(shí)應(yīng)浸埋于OCT包埋劑或甲基纖維素糊狀液內(nèi),以保護(hù)組織。 
    -制成凍塊后若需保存,應(yīng)以鋁箔或塑料薄膜封包,貯存于-70?C冰箱。  
    2、切片 
    *供免疫組化用的冰凍切片同樣要求附貼平整,并有連續(xù)性。 
    *載玻片也應(yīng)清潔無(wú)油污,但一般無(wú)需涂抹粘附劑; 
    *切片時(shí),使用恒溫冷凍切片機(jī),在箱內(nèi)溫度-25?C,切片厚度一般為4~8?m 
    3、切片后處理 
    *切好的冰凍切片,室溫下自然晾干1~2h后,放入4?C丙酮固定10min,待干燥后作免疫組化染色或封存于-20℃。
    *冰凍切片由于切片技術(shù)要求較高,不易得到連續(xù)性很好的切片,其形態(tài)結(jié)構(gòu)亦不如石蠟片,且凍塊和切片不便于長(zhǎng)期貯存,因此冰凍切片的應(yīng)用受限。

    (三) 組織印片
    *將潔凈載玻片輕壓于已暴露病灶的新鮮組織切面,細(xì)胞即粘附于玻片,晾干后浸入冷丙酮或醋酸-乙醇固定10min,自然干燥后染片或-20℃保存。

    (四) 細(xì)胞培養(yǎng)片(細(xì)胞爬片)
    *貼壁細(xì)胞培養(yǎng),置蓋片于培養(yǎng)瓶中,使細(xì)胞在蓋片上生長(zhǎng),達(dá)適當(dāng)密度后取出固定(丙酮-20℃固定10~20min),再進(jìn)行免疫染色。
    -蓋片的處理方法同載玻片的處理,但泡酸時(shí)間2h即可。 
    -為了防止細(xì)胞脫片,可用多聚賴氨酸處理。

    (五) 細(xì)胞涂片
    *大多數(shù)細(xì)胞涂片由細(xì)胞懸液制成,包括: 
    -血液、尿液、腦脊液; 
    -體腔積液; 
    -組織穿刺吸取,如骨髓、淋巴結(jié)或其他實(shí)質(zhì)性組織 
    -懸浮培養(yǎng)的細(xì)胞或貼壁細(xì)胞經(jīng)消化后形成的懸液。

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